[0001] 本发明涉及萜类化合物技术领域，特别涉及一种二倍半萜类化合物 peniroquesines B、C、D、H和J及其制备方法和应用。

[0002] 萜类化合物(terpenes)-分子式为异戊二烯单位的倍数的烃类及其含氧 衍生物，是具有高度多样性的一天然产物，包括单萜、倍半萜、二萜、二倍 半萜、三萜等。许多萜类衍生物已被发展为治疗癌症、细菌感染、疟疾和其 他各种人类疾病的重要药物，因此萜类的合成就显得非常的重要。但由于生 源合成途径仍未完全阐明、萜类化合物具有非模块化的结构、没有普适的统 一的合成策略等因素，因而萜类化合物的来源途径依赖于天然产物的提取。

[0003] 二倍半萜类化合物(sesterterpenes)大部分属于海洋中各种海绵和藻类 植物及其内生真菌的次级代谢产物，在陆生植物中极为罕见，以往的研究发 现有极少数的微生物能够产生此类化合物。据文献报道，二倍半萜类化合物 具有抗炎、抗细胞毒、抗肿瘤以及抗菌等多种生物活性。

[0004] 本发明的目的在于提供可以通过微生物发酵得到的、新的具有抗炎及抗 肿瘤活性的二倍半萜类化合物。

[0005] 本发明提供了二倍半萜类化合物peniroquesines，具有式I所示的结构：

[0006]

[0007] 本发明还提供了上述技术方案所述二倍半萜类化合物peniroquesines、 C、D、H和J的制备方法，包括以下步骤：

[0008] (1)将娄地青霉接种于发酵培养基中发酵，得到娄地青霉发酵物； 所述娄地青霉的保藏编号为CGMCC NO.14140；

[0009] (2)将所述步骤(1)得到的娄地青霉发酵物与醇混合后超声提取，得  到peniroquesines粗提物；

[0010] (3)以体积比在100:0～20:1范围内的多组氯仿-甲醇溶液为洗脱溶剂， 硅胶柱色谱洗脱所述步骤(2)得到的peniroquesines粗提物，得到的多组洗 脱液再分别经硅胶柱色谱纯化，得到二倍半萜类化合物peniroquesines，

[0011] 所述硅胶柱色谱洗脱为：

[0012] 用氯仿-甲醇溶液将所述peniroquesines粗提物溶解，得到粗提物溶液；

[0013] 将所述粗提物溶液与peniroquesines粗提物干重质量0.8～1.5倍的硅胶 混合，去除溶剂，装柱，依次用体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、5:1的 氯仿-甲醇溶液进行梯度洗脱，分别得到体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、 5:1的氯仿-甲醇溶液洗脱液；

[0014] 取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比100:1的石油醚 -丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液；

[0015] 取体积比为100:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚- 丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到含有peniroquesine B洗脱液；

[0016] 取体积比为50:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比25:1～10:1的石油 醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，分别得到含有peniroquesine C和 peniroquesine H洗脱液；

[0017] 取体积比为10:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比200:1的氯仿-甲 醇为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine J洗脱液；

[0018] 以甲醇为溶剂，将含有各化合物的洗脱液经葡聚糖凝胶纯化，分别得到 各二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H和J。

[0019] 优选地，所述步骤(1)中发酵培养基的制作原料中含有马铃薯或大米， 所述发酵的方式为固体发酵。

[0020] 优选地，所述步骤(1)中发酵的温度为20～28℃，发酵的时间为25～32d。

[0021] 优选地，所述步骤(2)中，娄地青霉发酵物与醇的质量体积比为(30～80) g:(50～150)mL。

[0022] 本发明还提供了所述的二倍半萜类化合物peniroquesines中的至少一种 在制备抗炎药物中应用。

[0023] 本发明还提供了所述的二倍半萜类化合物peniroquesines中的至少一种 在制备抗肿瘤药物中应用。

[0024] 本发明提供的二倍半萜类化合物peniroquesines是具有新颖的5/6/5/6/5 五环系新骨架结构，丰富了二倍半萜类化合物的多样性。同时，对化合物 peniroquesines B、C、D、H和J的NO(一氧化氮)抑制活性及对5种肿瘤 细胞抑制活性筛选试验表明，化合物peniroquesines B,D和H对NO的生成 表现出了明显的抑制活性，化合物peniroquesines B-D及H对5种肿瘤细胞 表现出了明显的抑制活性。

[0025] 进一步地，本发明提供的二倍半萜类化合物peniroquesines为娄地青霉 的代谢产物，可以通过微生物发酵制备得到，制备方法周期短、培养条件温 和、副产物少、立体选择性强、成本低。本发明提供的二倍半萜类化合物 peniroquesines制备方法简单易行，易于实现工业化，不仅符合现代环保和低 碳经济的需求，还能够为二倍半萜类化合物的量产提供新途径。

[0026] 本发明提供的二倍半萜类化合物peniroquesines能够应用于制备抗炎及 抗肿瘤药物，为开发抗炎和抗肿瘤药物提供新的选择。

[0027] 生物保藏说明：

[0028] 娄地青霉(Penicillium roqueforti)，于2017年8月4日保藏在中国微生 物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，地址为北京市朝阳区北辰西路1号 院3号，中国科学院微生物研究所；生物保藏编号为CGMCC No.14140。附图说明

[0029] 图1为peniroquesine B的1H-1H COSY谱；

[0030] 图2为peniroquesine B的HMBC谱；

[0031] 图3为peniroquesine B的HSQC碳谱；

[0032] 图4为peniroquesine B的HR-ESI-MS谱；

[0033] 图5为peniroquesine C的1H-1H COSY谱；

[0034] 图6为peniroquesine C的HMBC谱；

[0035] 图7为peniroquesine C的HSQC碳谱；

[0036] 图8为peniroquesine C的HR-ESI-MS谱；

[0037] 图9为peniroquesine D的1H-1H COSY谱；

[0038] 图10为peniroquesine D的HMBC谱；

[0039] 图11为peniroquesine D的HSQC碳谱；

[0040] 图12为peniroquesineD的HR-ESI-MS谱；

[0041] 图13为peniroquesine H的1H-1H COSY谱；

[0042] 图14为peniroquesine H的HMBC谱；

[0043] 图15为peniroquesine H的HSQC碳谱；

[0044] 图16为peniroquesine H的HR-ESI-MS谱；

[0045] 图17为peniroquesine J的1H-1H COSY谱；

[0046] 图18为peniroquesine J的HMBC谱；

[0047] 图19为peniroquesine J的HSQC碳谱；

[0048] 图20为peniroquesine J的HR-ESI-MS谱。

[0049] 本发明提供了二倍半萜类化合物peniroquesines，具有式I所示的结构：

[0050]

[0051] 本发明中二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H和J的化学名 称分别为：

[0052] peniroquesine B：

[0053] (1S,3aR,5aS,5cS,8aS,10R,10aS,11bR)-1,6,6,8a,10a,11b-六甲基 -2,3,3a,4,5,5a,5b,5c,6,7,8,8a,9,10,10a,11b-十六氢-1H-双环戊[a,g]芴-10-醇；

[0054] peniroquesine C：

[0055] (1S,3aR,5aS,5cS,8aR,10R,10aS,11bR)-8a-(羟甲基)-1,6,6,10a,11b-五甲基 -2,3,3a,4,5,5a,5b,5c,6,7,8,8a,9,10,10a,11b-十六氢-1H-双环戊[a,g]芴-10-醇；

[0056] peniroquesine D：

[0057] (1S,3aS,4R,5aS,8aS,10R,10aS,11bR)-1,6,6,8a,10a,11b-六甲基 -2,3,3a,4,5,5a,5b,5c,6,7,8,8a,9,10,10a,11b-十六氢-1H-双环戊[a,g]芴-4,10-二醇； 
peniroquesine H：

[0058] (1S,3aS,4S,5aS,5cS,8S,8aS,10aS,11bR)-1,6,6,8a,10a,11b-六甲基 -2,3,3a,4,5,5a,5b,5c,6,7,8,8a,9,10,10a,11b-十六氢-1H-双环戊[a,g]芴-4,8-二醇； 
peniroquesine J：

[0059] (1S,3aR,5aS,5cS,8S,8aS,10R,10aS,11bR)-1,6,6,8a,10a,11b-六甲基 -2,3,3a,4,5,5a,5b,5c,6,7,8,8a,9,10,10a,11b-十六氢-1H-双环戊[a,g]芴-8,10-二醇。

[0060] 本发明还提供了上述技术方案所述二倍半萜类化合物peniroquesines的 制备方法，包括以下步骤：

[0061] (1)将娄地青霉接种于发酵培养基中发酵，得到娄地青霉发酵物； 所述娄地青霉的保藏编号为CGMCC NO.14140；

[0062] (2)将所述步骤(1)得到的娄地青霉发酵物与醇溶液混合后超声提取， 得到peniroquesines粗提物；

[0063] (3)以体积比在100:0～20:1范围内的多组氯仿-甲醇溶液为洗脱溶剂， 硅胶柱色谱洗脱所述步骤(2)得到的peniroquesines粗提物，得到的多组洗 脱液再分别经硅胶柱色谱纯化，得到二倍半萜类化合物peniroquesines，

[0064] 所述硅胶柱色谱洗脱为：

[0065] 用氯仿-甲醇溶液将所述peniroquesines粗提物溶解，得到粗提物溶液；

[0066] 将所述粗提物溶液与peniroquesines粗提物干重质量0.8～1.5倍的硅胶 混合，去除溶剂，装柱，依次用体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、5:1的 氯仿-甲醇溶液进行梯度洗脱，分别得到体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、 5:1的氯仿-甲醇溶液洗脱液；

[0067] 取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比100:1的石油醚 -丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液；

[0068] 取体积比为100:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚- 丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到含有peniroquesine B洗脱液；

[0069] 取体积比为50:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比25:1～10:1的石油 醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，分别得到化合物peniroquesine C和 peniroquesine H洗脱液；

[0070] 取体积比为10:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比200:1的氯仿-甲 醇为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine J洗脱液；

[0071] 以甲醇为溶剂，将含有各化合物的洗脱液经葡聚糖凝胶纯化，分别得到 各二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H和J。

[0072] 本发明将保藏编号为CGMCC NO.14140的娄地青霉接种于发酵培养基 中发酵，得到娄地青霉发酵物。在本发明中，所述发酵的温度优选为20～28℃， 更优选为25～27℃，所述发的酵时间优选为25～32d，更优选为30d。

[0073] 在本发明中，所述娄地青霉进行接种前还优选包括在PDA斜面培养基 中活化。在本发明中，所述活化的温度优选为28℃，所述活化的时间优选为 3～7d。在本发明中，所述娄地青霉活化后优选置于4℃冰箱中储存备用。

[0074] 本发明中，所述娄地青霉(Penicillum rpqueforti)保藏于中国微生物菌 种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为CGMCC NO.14140。该娄 地青霉来源于黄草乌，是黄草乌(Aconitum vilmorinianum Kom.)的内生真 菌，更具体来说，所述娄地青霉从黄草乌根部分离得到。

[0075] 在本发明中，所述发酵培养基的制作原料中优选包括马铃薯或大米，更 优选为以马铃薯为原料制作的发酵培养基。本发明中，所述发酵培养基能够 使娄地青霉生长繁殖即可。

[0076] 在本发明中，所述发酵培养基优选经过灭菌处理。在本发明中，所述灭 菌的温度优选为120℃，所述灭菌的时间优选为30min。

[0077] 在本发明中，所述娄地青霉的发酵方式优选为固体发酵。娄地青霉在液 体发酵中的代谢时间较长，本发明采用固体发酵方式能够缩短发酵时间。

[0078] 在本发明中，所述娄地青霉的接种量优选为0.5～2.5g。

[0079] 得到娄地青霉发酵物后，本发明将所述娄地青霉发酵物与醇溶液混合后 超声提取，得到peniroquesines粗提物。在本发明中，所述娄地青霉发酵物 与醇的质量体积比优选为(30～80)g:(50～150)mL，更优选为40～60g:80～120 mL，最优选为50g:100mL。在本发明中，所述醇溶液优选为甲醇、乙醇、 丙醇或异丙醇。本发明采用醇溶液将二倍半萜类化合物peniroquesines从娄 地青霉发酵物中分离出来。

[0080] 本发明对所述混合的具体方式没有特殊的限定，采用本领域技术人员熟 知的混合方式即可。

[0081] 在本发明中，所述超声的时间优选为20～40min，更优选为30min；所 述超声的功率优选为250W～350W，更优选为300W。

[0082] 超声完成后，本发明优选将超声提取产物过滤，取滤液并去除溶剂，得 到含有peniroquesines的粗提物。本发明优选采用减压蒸馏的方式去除所述 滤液中的溶剂，具体的如，将滤液减压浓缩至无醇味。在本发明中，所述减 压浓缩的压力优选为10～15kPa，更优选为13kPa；所述减压浓缩的温度优 选为48～55℃，更优选为50℃。

[0083] 得到含有peniroquesines粗提物后，本发明以体积比在100:0～20:1范围 内的多组氯仿-甲醇溶液为洗脱溶剂，硅胶柱色谱洗脱所述peniroquesines粗 提物，得到的多组洗脱液再分别经硅胶柱色谱纯化，得到二倍半萜类化合物 peniroquesines，

[0084] 所述硅胶柱色谱洗脱为：

[0085] 用氯仿-甲醇溶液将所述peniroquesines粗提物溶解，得到粗提物溶液；

[0086] 将所述粗提物溶液与peniroquesines粗提物干重质量0.8～1.5倍的硅胶 混合，去除溶剂，装柱，依次用体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、5:1的 氯仿-甲醇溶液进行梯度洗脱，分别得到体积比为100:0、100:1、50:1、10:1、 5:1的氯仿-甲醇溶液洗脱液；

[0087] 取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比100:1的石油醚 -丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液；

[0088] 取体积比为100:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚- 丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到含有peniroquesine B洗脱液；

[0089] 取体积比为50:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比25:1～10:1的石油 醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，分别得到含有peniroquesine C和 peniroquesine H洗脱液；

[0090] 取体积比为10:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比200:1的氯仿-甲 醇为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine J洗脱液；

[0091] 以甲醇为溶剂，将含有各化合物的洗脱液经葡聚糖凝胶纯化，分别得到 各二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H和J。

[0092] 在本发明中，所述用于溶解peniroquesines粗提物的氯仿-甲醇溶液为任 意体积比的氯仿-甲醇溶液。本发明优选采用200～300目硅胶进行洗脱。在 本发明中，所述去除溶剂的方法为减压蒸馏法；所述减压浓缩的温度优选为 48～55℃，更优选为50℃。

[0093] 本发明对所获得的各氯仿-甲醇溶液洗脱部分进行硅胶柱层析洗脱时， 所述洗脱溶剂流速优选为2～4mL/min，更优选为3mL/min；所述洗脱溶剂 优选为氯仿-甲醇体系或石油醚-丙酮体系，更优选为石油醚-丙酮体系，具体 的，如取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比100:1的石油  醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液，取体积比 为100:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚-丙酮为溶剂过 硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine B洗脱液，取体积比为50:1的氯仿-甲 醇溶液洗脱部分，以体积比25:1～10:1的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗 脱，分别得到peniroquesine C和peniroquesine H洗脱液,取体积比为10:1的 氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比200:1的氯仿-甲醇为溶剂过硅胶柱层析  洗脱，得到
peniroquesine J洗脱液。

[0094] 得到含有各化合物的洗脱液后，发明对所述洗脱液进行柱凝胶柱色谱纯 化，分别得到peniroquesines B、C、D、H和J。在本发明中，所述凝胶柱色 谱优选为葡聚糖凝胶柱色谱。在本发明中，所述凝胶柱色谱纯化时的溶剂优 选为甲醇。

[0095] 在本发明中，所述甲醇的流速优选为0.4～0.6mL/min，更优选为0.5 mL/min。

[0096] 本发明还提供了上述技术方案所述二倍半萜类化合物peniroquesines中 的至少一种在制备抗炎药物中的应用。在本发明中，所述抗炎药物中抗炎及 二倍半萜类化合物peniroquesines的质量百分数优选为1～99％，更优选为 55～90％。

[0097] 本发明还提供了上述技术方案所述二倍半萜类化合物peniroquesines中 的至少一种在制备抗肿瘤药物中的应用。在本发明中，所述抗肿瘤药物中二 倍半萜类化合物peniroquesines的质量百分数优选为1～99％，更优选为 55～90％。

[0098] 在本发明中，所述抗炎及抗肿瘤药物中还优选包括药用辅料，选择本领 域常规的制药辅料即可。

[0099] 在本发明中，所述抗炎及抗肿瘤药物采用本领域熟知的制备方法制成片 剂、颗粒剂、注射剂剂型均可。

[0100] 为了进一步说明本发明，下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行 详细地描述，但不能将它们理解为对本发明保护范围的限定。

[0101] 实施例1

[0102] 制备二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H和J

[0103] 1、菌种活化：将娄地青霉(保藏编号为CGMCC NO.14140)接种到PDA 斜面培养基上，28℃恒温培养3～7d后，置于4℃冰箱中储存备用。

[0104] 2、发酵培养基的制备：取洗净的土豆，分成直径1cm的土豆块置于组 织培养瓶中，50g/瓶，组织培养瓶加盖后在120℃下高温灭菌30min，冷却， 即得发酵培养基。

[0105] 3、将步骤1活化的娄地青霉按照1％的接种量接种到步骤2制得的发 酵培养基，加盖后在28℃下恒温培养30d，得到娄地青霉发酵物。

[0106] 4、取50g步骤3得到的娄地青霉发酵物与100mL甲醇混合，混合溶 液在40kHz条件下超声30min，过滤，取滤液进行减压浓缩至无醇味，得 到25.0gpeniroquesines粗提物。

[0107] 5、用体积比为2:1的氯仿-甲醇溶液30mL溶解25.0g的peniroquesines 粗提物，再与25.0g硅胶(200目)混合，减压浓缩去除溶剂，装柱；依次 以体积比100:0，100:1，50:1，10:1，5:1的氯仿:甲醇进行梯度洗脱，洗脱流 速为2mL/min，各洗脱段得到5个部分；

[0108] 取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比100:1的石油醚 -丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液，以体积比80:1 的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，取体积比为100:1的氯仿-甲醇溶 液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到 peniroquesine B洗脱液，取体积比为50:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体 积比25:1～10:1的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine C和peniroquesine H洗脱液,取体积比为10:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分， 以体积比200:1的氯仿-甲醇为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine J 洗脱液；洗脱时，洗脱剂的流速为4mL/min。

[0109] 以甲醇为溶剂，对洗脱液进行葡聚糖凝胶柱色谱纯化，干燥，得到化合  物peniroquesines B、C、D、H和J，甲醇的流速为0.4mL/min。

[0110] 取实施例1制备得到的二倍半萜类化合物peniroquesines B、C、D、H 和J，通过2DNMR(二维核磁共振波谱)以及HR-ESI-MS(高分辨电喷雾 电离质谱)鉴定得到的化合物的结构，其中图1为peniroquesine B的1H-1H COSY谱，图2为peniroquesine B的HMBC谱，图3为peniroquesine B的  HSQC碳谱，图4为peniroquesine B的HR-ESI-MS谱；图5为
peniroquesine C的1H-1H COSY谱，图6为peniroquesine C的HMBC谱，图7为peniroquesine C的HSQC碳谱，图8为peniroquesine C的HR-ESI-MS谱；图9为 peniroquesine D的1H-1H COSY谱，图10为peniroquesine D的HMBC谱， 图11为peniroquesine D的HSQC碳谱，图12为peniroquesineD的HR-ESI-MS 谱；图13为peniroquesine H的1H-1H COSY谱，图14为peniroquesine H的 HMBC谱，图15为peniroquesine H的HSQC碳谱，图16为peniroquesine H 的HR-ESI-MS谱；图17为peniroquesine J的1H-1H COSY谱，图18为 peniroquesine J的HMBC谱，图19为peniroquesine J的HSQC碳谱，图20 为peniroquesine J的HR-ESI-MS谱。

[0111] 化合物peniroquesines B、C、D、H和J的H和与之相连接的C的化学 位移δ归属如表1所示，表2为peniroquesines B、C、D、H和J的1HNMR (600MHz)数据。

[0112] 表1 peniroquesines B、C、D、H和J的13CNMR(150MHz)数据

[0113]

[0114]

[0115] aMeasured in C5D5N

[0116] 表2 peniroquesines B、C、D、H和J的1HNMR(600MHz)数据(δ,Jin Hz)

[0117]

[0118]

[0119] aMeasuredinC5D5N

[0120] 以peniroquesines B为例：

[0121] 根据peniroquesines B的13C NMR(150MHz)数据和peniroquesine B的 HR-ESI-MS谱可以看出，该化合物的分子式为C25H40O(m/z:379.2971[M+ Na]+,计算值：379.2971),不饱和度为6。

[0122] 由peniroquesines B的HMBC谱和1H-1H COSY谱中CH3-20(δH 0.77q) 与C-1(δC 37.3d)，C-2(δC 31.1t)和C-9(δC 46.4s)相关，CH3-21(δH 0.85 s)与C-1和C-9的相关表明CH3-20与CH3-21分别与C-1和C-9相 连，1H-1H COSY谱中CH3-20与H-1(δH 1.96m)，H-1与H-2(δH 1.24m, 1.54m)，H-2与H-3(δH 1.89m)，H-3与H-4(δH 1.64m)，H-4与H-5(δH 1.26m)，H-5与H-6(δH 0.86m,1.91m)，H-6与H-7(δH 2.23m)，H-7与 H-12(δH 1.51m)，H-12与H-13(δH 
1.23overlap)的相关确定了 C(20)-C(1)-C(2)-C(3)-C(4)-C(5)-C(6)-C(7)-C(12)-C(13)的连接骨架。
HMBC谱中CH3-21 与C-4(δC 48.2d)的相关确定了C(4)-C(9)键的存在，CH3-21与C-8(δC 
149.1s)的相关确定了C(8)-C(9)键的连接，H-7与C-8和C-10(δC 132.9d) 同时存在HMBC相关表明C-7(δC 52.5d)与双键碳C-8相连，至此确定 了peniroquesine B的A环和B环。HMBC谱中CH3-22(δH 1.10s)与C-10， C-11(δC 49.1s)和C-12(δC 53.5d)的相关确定了C(10)-C(11)-C(12)的结构连接 片段，至此确定了peniroquesine B的C环。HMBC谱中CH3-23(δH 1.15s) 与C-14(δC 42.8s)和C-13(δC 57.5d)的相关,确定了C(13)-C(14)键的存在， CH3-24(δH 0.84s)和CH3-25(δH 0.91s)与C-19(δC 43.6s)和C-13(δC 57.5d)的相关确定了C(13)-C(19)键的连接。同样，CH3-24和CH3-25与C-18 (δC 40.1t)的HMBC相关，CH3-23与C-17(δC 41.9t)的HMBC相关， H-17(δH 1.53m,1.64m)与H-18(δH 1.42m,1.66m)的1H-1H COSY相关， 确定了C(19)-C(18)-C(17)-C(14)的连接骨架，至此确定了peniroquesine B的F环。 CH3-23与C-15(δC 44.7t)
1 1
的HMBC相关，CH3-22与C-16(δC 75.0d)的 HMBC相关，以及H-17与H-18的 H-H COSY相关，表明存在 C(11)-C(16)-C(15)-C(14)的结构片段，至此确定了peniroquesine B的E环，至此 也确定了该化合物的结构。

[0123] 与peniroquesine B的碳谱数据对比显示，peniroquesine C、D、H和J 有着与peniroquesine B相同的骨架，其中peniroquesine C的HMBC谱中的 H-15，H-17与C-23相关，确定了C-23的甲基上连接了一个羟基； peniroquesine D的ROESY谱中H-5与H-4确定了C-5的绝对够型为R；1H-1H COSY谱中H-4,H-6与H-5相关确定了C-5上连接了一个羟基；通过 peniroquesine H的1H-1H COSY谱中H-17与H-18相关，HMBC谱中H-23 与C-17相关确定了羟基位于C-17位；peniroquesine J与peniroquesine B相 比多了一个含羟基的次甲基且少了一个亚甲基，通过peniroquesine J的1H-1H COSY谱中H-17与H-18相关，HMBC谱中H-23与C-17相关确定了羟基位 于C-17位。

[0124] 实施例2化合物peniroquesines B、C、D、H和J的抗炎活性：

[0125] 一氧化氮(NO)具有广泛而重要的生物学调控功能，在炎症、肿瘤及 心血管系统等均有重要作用。当免疫细胞遭受微生物内毒素、炎症介质等刺 激时，会生成大量的诱导型一氧化氮合成酶(iNOS)，产生NO进行免疫应 答，因此抑制NO生成是化合物抗炎活性的直接指标。

[0126] (1)取对数生长期的小鼠单核巨噬细胞RAW264.7(购自中科院上海细 胞库)，用1μg/ml LPS进行诱导刺激，同时加入实施例1制备得到的化合物 peniroquesines B、C、D、H和J处理，化合物peniroquesines B、C、D、H 和J的终浓度依次为3.125μM、6.25μM、12.5μM、25μM和50μM五个梯 度，每个梯度设置三个平行样，25℃条件下培养。

[0127] 设置不含药物组和L-NMMA(总NOS抑制剂)阳性药物组按照上述相 同步骤进行处理，作为对照。

[0128] (2)细胞过夜(10h)培养后，在570nm处检测各组的NO生成量； 向过夜培养得到的培养液中加入MTS进行细胞存活率检测，排除化合物对 细胞的毒性影响。

[0129] NO生成抑制率(％)＝(不含药物组OD570nm-药物组OD570nm)/不含 药物组OD570nm×100％；

[0130] IC50(半数抑制浓度)按Reed&Muench法计算，得到化合物 peniroquesines B、C、D、H和J的NO抑制活性的IC50。结果如表3所示。

[0131] 实施例3化合物peniroquesines B、C、D、H和J的抗肿瘤活性：

[0132] MTS法检测细胞活性原理：MTS全称为3-(4， 5-dimethylthiazol-2-yl)-5(3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sulfopheny)-2H-tetraz olium，是一种黄颜色的染料。活细胞线粒体中琥珀酸脱氢酶能够代谢还原 MTS，生成可溶性的甲臜(Formazan)化合物，甲臜的含量可以用酶标仪在 490nm处进行测定。在通常情况下，甲臜生成量与活细胞数成正比，因此可 根据光密度OD值推测出活细胞的数目。

[0133] (1)接种细胞：用含10％胎牛血清的培养液(DMEM或者RMPI1640) 配成单个细胞悬液，以每孔3000～15000个细胞接种到96孔板，每孔体积 100μl，贴壁细胞提前12～24小时接种培养。

[0134] (2)加入待测化合物溶液：化合物用DMSO溶解，化合物以40μM、 8μM、1.6μM、0.32μM、0.064μM浓度复筛，每孔终体积200μL，每种处理 均设3个复孔。

[0135] (3)显色：37摄氏度培养48小时后，贴壁细胞弃孔内培养液，每孔加 MTS溶液20μL和培养液100μl；悬浮细胞弃100μL培养上清液，每孔加20μL 的MTS溶液；设3个空白复孔(MTS溶液20μL和培养液100μL的混合液)， 继续孵育2～4小时，使反应充分进行后测定光吸收值。

[0136] (4)比色：选择492nm波长，多功能酶标仪(MULTISKAN FC)读取 各孔光吸收值，数据处理后以浓度为横坐标，细胞存活率为纵坐标绘制细胞 生长曲线，应用两点法(Reed andMuench法)计算化合物的IC50值。

[0137] (5)阳性对照化合物：每次实验均设顺铂(DDP)和紫杉醇(Taxol) 两个阳性化合物，以浓度为横坐标，细胞存活率为纵坐标绘制细胞生长曲线，  应用两点法(Reed andMuench法)计算化合物的IC50值。结果如表3所示。

[0138] 表3为peniroquesines B、C、D、H和J的NO抑制活性及抗肿瘤活性 筛选结果，由表3可知，在对化合物peniroquesines B、C、D、H和J的NO 抑制活性(阳性对照为：L-NMMA)筛选试验中，化合物peniroquesine B， peniroquesine D以及peniroquesine H对一氧化氮(NO)的生成表现出了明 显的抑制活性。在对化合物peniroquesinesB、C、D、H和J对体外五种肿瘤 细胞的抑制活性(阳性对照为：顺铂，紫杉醇)筛选试验中,peniroquesines B-D， peniroquesine  H及peniroquesine J均表现出了良好的抗肿瘤活性，因此， peniroquesinesB、C、D、H和J具有作为先导化合物开发抗炎及抗肿瘤药物 的研究价值。而基于微生物发酵的大量而简单的产生抗炎及抗肿瘤化合物 peniroquesines B、C、D、H和J的方法，不仅可以现代环境保护和低碳经济 的需求，而且为后期该抗炎及抗肿瘤化合物工业化量产的进一步研究和开发 打下了坚实的基础，具有显著的应用价值。

[0139] 表3 peniroquesinesB、C、D、H和J的NO抑制活性及抗肿瘤活性筛选(IC50)[0140]

[0141]

[0142] 实施例3

[0143] 1、菌种活化：将娄地青霉(保藏编号为CGMCC NO.14140)接种到PDA 斜面培养基上，28℃恒温培养3～7d后，置于4℃冰箱中储存备用。

[0144] 2、发酵培养基的制备：取50g大米浸泡在40ml水中12h，取出大米 置于组织培养瓶中，50g/瓶，组织培养瓶加盖后在120℃下高温灭菌30min， 冷却，即得发酵培养基。

[0145] 3、将步骤1活化的娄地青霉按照1％的接种量接种到步骤2制得的发酵 培养基，加盖后在26℃下恒温培养25d，得到娄地青霉发酵物。

[0146] 4、取45g步骤3得到的娄地青霉发酵物与120ml甲醇按照质量体积比 混合，混合溶液在40kHz条件下超声30min，过滤，取滤液进行减压浓缩 至无醇味，得到peniroquesines粗提物。

[0147] 5、用体积比为2:1的氯仿-甲醇溶液30ml溶解25.0g的peniroquesines粗 提物，再与25.0g硅胶(300目)混合，减压浓缩去除溶剂，装柱；依次以 体积比100:0，100:1，50:1，10:1，5:1的氯仿:甲醇进行梯度洗脱，合并各洗 脱段得到5个部分，取体积比为100:0的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比 100:1的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine D洗脱液， 取体积比为100:1的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比60:1的石油醚-丙酮 为溶剂过硅胶柱层析洗脱，得到peniroquesine B洗脱液，取体积比为50:1 的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比25:1～10:1的石油醚-丙酮为溶剂过硅胶 柱层析洗脱，得到peniroquesine C和peniroquesine H洗脱液,取体积比为10:1 的氯仿-甲醇溶液洗脱部分，以体积比200:1的氯仿-甲醇为溶剂过硅胶柱层 析洗脱，得到peniroquesine J洗脱液。以甲醇为溶剂，对洗脱液进行葡聚糖 凝胶柱色谱纯化，干燥，得到化合物peniroquesines B、C、D、H和J。

[0148] 对本实施例制得的化合物peniroquesinesB、C、D、H和J的结构进行表 征，结果与实施例1类似。

[0149] 以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普 通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润 饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。